Dermatofitosis
Infección superficial del pelo, la piel y las uñas por hongos dermatofitos, en el gato sobre todo Microsporum canis. Causa alopecia con descamación, es muy contagiosa entre animales y es una zoonosis frecuente.
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Qué es
La dermatofitosis ("tiña") es una infección de las estructuras queratinizadas (pelo, estrato córneo, uñas) por hongos dermatofitos. En el gato la gran mayoría de los casos se deben a Microsporum canis; con menos frecuencia intervienen Trichophyton mentagrophytes (de roedores) y Nannizzia gypsea (antes Microsporum gypseum, del suelo). El gato es el reservorio principal de M. canis. Las esporas (artroconidias) se transmiten por contacto directo con animales infectados o con pelos y escamas del entorno, donde pueden sobrevivir mucho tiempo, y necesitan una pequeña lesión de la piel para establecer la infección. Los hongos invaden el folículo y el tallo del pelo, que se vuelve frágil y se rompe.
Es una zoonosis: las personas, sobre todo los niños, se infectan con facilidad y desarrollan lesiones circulares en la piel.
A quién afecta
Gatitos, gatos de pelo largo (el persa está muy predispuesto), gatos de refugios, criaderos y colonias, y gatos inmunodeprimidos. En los adultos sanos la infección suele ser leve y puede resolverse sola en meses, aunque el gato sigue contagiando mientras tanto. Algunos gatos son portadores mecánicos sin lesiones.
Anatomía implicada
- Folículos pilosos y tallo del pelo: el hongo forma esporas alrededor del pelo y dentro de él, lo que causa su rotura y alopecia.
- Piel: descamación, costras y, a veces, eritema; la inflamación suele ser escasa.
- Uñas y pliegues ungueales: onicomicosis, poco frecuente.
- En los persas pueden formarse pseudomicetomas: nódulos dérmicos o subcutáneos profundos causados por M. canis.
Signos clínicos
Muy variables. Lo típico son placas de alopecia circulares o irregulares, con descamación y pelos rotos, sobre todo en la cabeza, las orejas, el hocico y los miembros torácicos, aunque las lesiones pueden ser generalizadas. El prurito es variable, por lo general leve. Otras presentaciones: dermatitis miliar, lesiones parecidas a acné en el mentón, granulomas o una descamación difusa. En las personas de la casa pueden aparecer lesiones circulares rojas con borde descamativo.
Diagnóstico
- Lámpara de Wood: muchos aislados de M. canis hacen que los pelos infectados fluorezcan de color verde manzana; un resultado negativo no descarta la infección y la fluorescencia de escamas o medicamentos puede confundir.
- Tricograma: pelos con esporas e hifas al microscopio.
- Cultivo fúngico, la prueba de referencia: se cepilla todo el pelo con un cepillo de dientes estéril (técnica de McKenzie) y se siembra en un medio para dermatofitos; permite identificar la especie y controlar el tratamiento.
- PCR: rápida y sensible, pero puede detectar ADN de hongos muertos, por lo que no sirve por sí sola para comprobar la curación.
- Biopsia para los pseudomicetomas y las presentaciones atípicas.
Tratamiento
Aunque en gatos sanos puede curarse sola, siempre se trata por el riesgo de contagio a animales y personas:
- Tratamiento sistémico: itraconazol (autorizado para gatos en algunos países) o terbinafina. La griseofulvina se usa menos por sus efectos adversos: es teratógena y puede causar supresión medular, sobre todo en gatos positivos al FIV.
- Tratamiento tópico de todo el cuerpo, dos veces por semana: baños con azufre cálcico, enilconazol o champú de miconazol y clorhexidina, que reducen la contaminación del pelo. El corte del pelo puede ayudar en gatos de pelo largo, con cuidado de no lesionar la piel.
- Descontaminación del entorno: aspirar y limpiar las superficies, lavar la ropa de cama y desinfectar con productos esporicidas; limitar el gato a una zona fácil de limpiar durante el tratamiento.
Se mantiene el tratamiento hasta la curación micológica: desaparición de las lesiones y cultivos negativos. En refugios y criaderos se necesita un plan de control de toda la población.
Estudios clave
- Consenso de la WAVD (Moriello et al., 2017): es la guía de referencia para perros y gatos. Ninguna prueba es por sí sola el patrón de referencia; el tratamiento eficaz combina un antifúngico oral con tratamiento tópico de todo el pelaje, y la limpieza física es lo más importante para descontaminar el entorno. Las complicaciones graves por contagio a personas son excepcionales.
Diagnóstico y curación
- DeTar et al. (2019), dos años de registros de un refugio de Estados Unidos. La prevalencia de M. canis fue del 1,8 % y los gatitos tuvieron 8 veces más probabilidad de infección que los adultos. Frente al cultivo, la lámpara de Wood tuvo una sensibilidad del 66,8 % y una especificidad del 74,8 % en este refugio. Todos los cultivos diagnósticos de gatos infectados mostraron crecimiento antes de 7 días (mediana de 4).
- Moriello y Leutenegger (2018), 52 gatos de refugio con lesiones. La PCR cuantitativa coincidió con el cultivo en 49 de 52 gatos y detectó 45 de 46 infecciones por M. canis. Fue menos útil para confirmar la curación: tras dos cultivos negativos, la PCR específica de M. canis clasificó bien al 84,8 % de los gatos y la de Microsporum spp. solo al 65,2 %, porque seguía siendo positiva en muestras con cultivo negativo.
- Stuntebeck y Moriello (2020), 371 gatos de refugio con cultivos semanales durante el tratamiento. En el 90,3 % el primer cultivo negativo ya indicaba la curación micológica. Las excepciones fueron errores de muestreo al principio del tratamiento y gatos con otras enfermedades, que tardaron más en curarse (media de 11 semanas). En gatos sanos y bien tratados quizá no sean necesarios dos cultivos negativos. Es retrospectivo y de un solo programa.
Tratamiento tópico
- DeTar et al. (2025), ensayo aleatorizado con 76 gatos de cuatro refugios, todos tratados con itraconazol oral. Con azufre cálcico se curaron todos antes de 7 semanas (media de 27 días); con champú de miconazol y clorhexidina no se curó en ese plazo el 37,5 % (media de 37 días) y con champú de peróxido de hidrógeno, el 21,7 % (media de 36 días). La prueba formal de inferioridad no fue concluyente. Los gatos más jóvenes tardaron más en curarse, y el personal no notó diferencias en cómo toleraban los gatos cada producto.
- Newbury et al. (2011), ensayo abierto no aleatorizado con 90 gatos de refugio con dermatofitosis grave, todos con itraconazol oral durante 21 días. La mediana hasta la curación fue de 30 días con azufre cálcico, 34 con una fórmula de azufre cálcico con enmascarador del olor. Con un enjuague de miconazol y clorhexidina, 13 de 32 gatos necesitaron repetir el tratamiento y los 19 restantes tardaron una mediana de 48 días en curarse.
Referencias
- Moriello KA, Coyner K, Paterson S, Mignon B. Diagnosis and treatment of dermatophytosis in dogs and cats: Clinical Consensus Guidelines of the World Association for Veterinary Dermatology. Vet Dermatol 28:266-e68 (2017)
- Frymus T, Gruffydd-Jones T, Pennisi MG, et al. Dermatophytosis in cats: ABCD guidelines on prevention and management. J Feline Med Surg 15:598-604 (2013)
- Miller WH, Griffin CE, Campbell KL. Muller and Kirk's Small Animal Dermatology, 7th ed. Elsevier (2013)
- DeTar LG, Dubrovsky V, Scarlett JM. Descriptive epidemiology and test characteristics of cats diagnosed with Microsporum canis dermatophytosis in a Northwestern US animal shelter. J Feline Med Surg 21:1198-1205 (2019)
- Moriello KA, Leutenegger CM. Use of a commercial qPCR assay in 52 high risk shelter cats for disease identification of dermatophytosis and mycological cure. Vet Dermatol 29:66-e26 (2018)
- Stuntebeck RL, Moriello KA. One vs two negative fungal cultures to confirm mycological cure in shelter cats treated for Microsporum canis dermatophytosis: a retrospective study. J Feline Med Surg 22:598-601 (2020)
- DeTar L, Janke KJ, Jacobson L. Randomized, non-inferiority clinical trial of three topical dermatophytosis treatments in shelter cats. J Feline Med Surg 27(9):1098612X251360611 (2025)
- Newbury S, Moriello KA, Kwochka KW, et al. Use of itraconazole and either lime sulphur or Malaseb Concentrate Rinse to treat shelter cats naturally infected with Microsporum canis: an open field trial. Vet Dermatol 22:75-79 (2011)